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    原代角質(zhì)形成細胞的分離培養(yǎng)方法

    發(fā)布時間: 2022-10-25  點擊次數(shù): 1014次
    為什么越來越多的生物實驗開始使用原代細胞?

    圖片

     

    原代細胞在相關細胞實驗使用過程中越來越多,人們不再單單趨于使用細胞系進行實驗研究,因為細胞系常常由于體外長期培養(yǎng),而容易丟失原有的生物學特性,對藥物處理的反應差距越來越大。

    原代細胞剛從組織中分離開,生物學特性未發(fā)生很大變化,仍保留原來的遺傳特性,也*為接近和反應體內(nèi)生長特性,原代細胞的活力和生長狀態(tài)都比較好,細胞的純度和基因保留可達到90%以上,適宜用于藥物敏感性試驗、細胞分化等試驗研究,使用原代細胞進行實驗,可以獲得更準確的研究和數(shù)據(jù)。

     

    角質(zhì)形成細胞

     

    角質(zhì)形成細胞是一種不斷分化的復層鱗狀上皮細胞,其分化的最終階是形成角蛋白。根據(jù)角質(zhì)形成細胞的發(fā)展階段和特點,從內(nèi)向外可將其分為五層?;准毎麑佑址Q生發(fā)層,棘細胞層,顆粒層,透明層,角質(zhì)層。

     

    角質(zhì)形成細胞的分化成熟表現(xiàn)為從基底層到向角質(zhì)層的逐漸移行。在單一移行過程中,角質(zhì)形成;細胞的形狀和功能也逐漸發(fā)生著變化,從單層柱狀上皮的基底層到扁平的細胞核消失的角質(zhì)層。

    新生的基底細胞進入棘細胞層,然后上移到顆粒層的最上層。細胞組織來源于實驗動物的正常皮膚組織,細胞生長狀態(tài)為貼壁培養(yǎng)。

     

    需要的實驗試劑

     

    1.培養(yǎng)基1:iCell原代角質(zhì)細胞培養(yǎng)體系

    4.基礎培養(yǎng)基:DMEM/F12

    5.緩沖液:無菌不含Ca2+和Mg2+的1×PBS+1×P/S,pH=7.4

    6.消化液1:1.2U/ml的dispase Ⅱ

    7.消化液2:0.25%胰蛋白酶+0.02mM EDTA

    8.消化液3:0.1%Ⅰ型膠原酶

    9.75%醫(yī)用酒精

    10.胎牛血清(FBS)

     

    實驗器械

     

    1.培養(yǎng)皿

    2.T-25細胞培養(yǎng)瓶

    3.100目不銹鋼網(wǎng)篩

    4.200目不銹鋼網(wǎng)篩

    5.眼科剪

    6.眼科鑷

    7.離心管(15ml、50ml)

     

    實驗步驟

     

    1.新鮮的包皮組織,裝盛于含有無菌生理鹽水或1×PBS的無菌容器中,于保溫盒中,冰上放置離體6h內(nèi)運輸?shù)綄嶒炇疫M行后續(xù)分離。

    2.在無菌環(huán)境中取出包皮組織,用1×PBS清洗2-3次去除表面血液后,75%的酒精浸泡100s

    3.酒精浸泡組織后快速將組織轉(zhuǎn)入裝有1×PBS的培養(yǎng)皿中震蕩清洗數(shù)次以去除酒精,然后用眼科剪小心剪去皮下組織(脂肪,微血管等)

    4.將去除了脂肪和微血管組織的再用1×PBS清洗幾次后,剪成3mm*8mm左右的皮片,用消化液1  4度消化過夜(15-18h)。

    5.第二天,用2個眼科鑷子小心撕開過夜消化的皮膚組織,分離真皮和表皮;

    6.分離的表皮用眼科剪剪碎后用消化液3 37度水浴消化1h。

    7.消化完成后用移液器充分吹打100次左右,然后用含血清的培養(yǎng)基終止消化,過200目不銹鋼網(wǎng)篩后取濾懸液,轉(zhuǎn)入15ml離心管中,400g離心10分鐘,離心完成后棄去上清,沉淀用3ml的1×PBS吹打重懸后,400g離心5min離心完成后棄去上清,沉淀用2ml的原代角質(zhì)細胞培養(yǎng)基吹打重懸后,轉(zhuǎn)入已經(jīng)裝有2ml培養(yǎng)基的T-25培養(yǎng)瓶中,將培養(yǎng)瓶置于37℃的二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

     

    8.視細胞貼壁情況48-72h后換液去除未貼壁的細胞,之后繼續(xù)培養(yǎng),視細胞生長狀況和培養(yǎng)基顏色每2-3d換液一次;待細胞貼壁率達到80-90%后,進行常規(guī)傳代擴增操作(角質(zhì)細胞對胰酶不太敏感,消化時間可能會增加到10-15分鐘,有時需要配合使用無菌細胞刮鏟進行傳代)。

     

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