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    細(xì)胞穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的操作步驟及經(jīng)驗(yàn)分享

    發(fā)布時(shí)間: 2024-06-12  點(diǎn)擊次數(shù): 411次

    細(xì)胞穩(wěn)定轉(zhuǎn)染是一種常用的基因傳遞技術(shù),其中慢病毒轉(zhuǎn)染作為一種有效的手段被廣泛采用。通過慢病毒載體,可將目的基因序列穩(wěn)定地整合到宿主細(xì)胞基因中,實(shí)現(xiàn)長期穩(wěn)定的表達(dá)。這種轉(zhuǎn)染方法不僅能夠在多種細(xì)胞系中高效地實(shí)現(xiàn)基因傳遞,還能夠?qū)崿F(xiàn)對特定基因的穩(wěn)定表達(dá),為基因功能研究和細(xì)胞工程提供了重要工具。


    早在1981年,科學(xué)家們發(fā)現(xiàn)并研究了人類免疫缺陷病毒I型(HIV-1),從而掀開了慢病毒作為載體的研究序幕。慢病毒(Lentivirus)載體是通過HIV-1進(jìn)行改造而得到的,其具備感染細(xì)胞的能力,包括分裂期和非分裂期細(xì)胞,同時(shí)在宿主體內(nèi)能夠?qū)崿F(xiàn)長期表達(dá)且具備較高的安全性。這種載體能夠穩(wěn)定表達(dá)外源基因,具有廣泛的感染范圍等優(yōu)勢,因此在基因過表達(dá)、RNA干擾、miRNA研究等實(shí)驗(yàn)中得到廣泛應(yīng)用。


    一、實(shí)驗(yàn)步驟

    1、提前一天準(zhǔn)備細(xì)胞

    在進(jìn)行轉(zhuǎn)染前一天,首先對293T細(xì)胞進(jìn)行胰酶消化處理,并將其培養(yǎng)于10厘米培養(yǎng)皿中,以確保細(xì)胞能夠充分貼壁且密度達(dá)70%-80%。隨后,將細(xì)胞置于37攝氏度、含有5% CO2的培養(yǎng)箱中孵育8至24小時(shí),待細(xì)胞全部貼壁后即可開始進(jìn)行轉(zhuǎn)染操作。


    2、轉(zhuǎn)染

    1)轉(zhuǎn)染前,需換液,使用10毫升血清培養(yǎng)基替換舊的培養(yǎng)基。


    2)制備混合物包括包裝質(zhì)粒和目的質(zhì)粒與轉(zhuǎn)染試劑;

    a. 將8µg 目的質(zhì)粒和16µg 病毒包裝質(zhì)粒(psPAX2:pMD2.G=1:1)加入到1ml 無血清Opti-DMEM,充分混合;


    b. 將50µl轉(zhuǎn)染試劑溶于1ml Opti-DMEM中,充分混合,靜置5分鐘;


    c. 將轉(zhuǎn)染試劑稀釋液滴加入質(zhì)粒稀釋液中,邊滴加邊輕輕混合,然后在室溫下靜置20分鐘,使DNA和轉(zhuǎn)染試劑充分結(jié)合形成穩(wěn)定的轉(zhuǎn)染復(fù)合物。取出培養(yǎng)皿,將配制好的DNA-轉(zhuǎn)染試劑混合物加入培養(yǎng)皿中,輕輕混合,標(biāo)記后放回培養(yǎng)箱中;


    3)經(jīng)過6~8小時(shí)后,吸除培養(yǎng)基,用4ml PBS清洗一次,然后加入8ml 新鮮血清培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng)。


    3、收病毒

    進(jìn)行轉(zhuǎn)染后,每隔24小時(shí)將培養(yǎng)上清收集至50毫升離心管中,進(jìn)行適當(dāng)標(biāo)記,并為細(xì)胞更換新鮮的血清培養(yǎng)基。在最后一次收集病毒液后,應(yīng)將接觸過病毒的槍頭、離心管、培養(yǎng)皿等物品浸泡于84消毒液中進(jìn)行消毒處理,然后安全丟棄。

    細(xì)胞穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的操作步驟及經(jīng)驗(yàn)分享

    4、包裝病毒

    貼壁細(xì)胞:

    1)慢病毒轉(zhuǎn)染前一天,將貼壁細(xì)胞鋪到24孔板中,確保每孔約有2×10^5個(gè)細(xì)胞。第二天,在37攝氏度下使用含有6 μg/ml polybrene的2毫升新鮮培養(yǎng)基替換原有培養(yǎng)基,并加入適量病毒懸液孵育。

    2)對于polybrene毒性敏感的細(xì)胞,在轉(zhuǎn)染后4小時(shí)內(nèi)加入2毫升新鮮培養(yǎng)基以稀釋polybrene。

    3)繼續(xù)培養(yǎng)24小時(shí),然后用新鮮培養(yǎng)基替換含病毒的培養(yǎng)基。

    4)繼續(xù)傳代培養(yǎng),如果慢病毒含有熒光蛋白,在轉(zhuǎn)染后48小時(shí)通常可觀察到明顯的熒光表達(dá),72小時(shí)后表達(dá)更為明顯,如果慢病毒含有抗性基因并需要進(jìn)行藥物篩選,則可在轉(zhuǎn)染3-4天后開始添加藥物。

    懸浮細(xì)胞:

    1)將濃度為6 μg/ml 的polybrene加入2×10^5/ml懸浮細(xì)胞中,并加入適量病毒,充分混勻后在37攝氏度下孵育?;蛘哌M(jìn)行室溫離心,離心速度為150g,持續(xù)4小時(shí)(對于難以轉(zhuǎn)染的細(xì)胞系,可選擇此步驟以提高轉(zhuǎn)染效率)。

    2)對于對polybrene毒性敏感的細(xì)胞,轉(zhuǎn)染后4小時(shí),加入相同體積的新鮮培養(yǎng)基以稀釋polybrene。

    3)繼續(xù)培養(yǎng)3-4天。根據(jù)細(xì)胞生長情況,可以進(jìn)行細(xì)胞傳代或者更換培養(yǎng)基

    二、注意事項(xiàng)

    1)進(jìn)行慢病毒相關(guān)實(shí)驗(yàn)時(shí)要注意安全,穿實(shí)驗(yàn)服,戴口罩和手套。

    2)在操作病毒時(shí)務(wù)必小心,避免產(chǎn)生氣霧或飛濺,所有接觸過病毒的工具,如槍頭、離心管、培養(yǎng)皿以及培養(yǎng)液,請浸泡在84消毒液中過夜后,確保全部消毒后再進(jìn)行處理。

    3)病毒操作時(shí)要使用生物安全柜,如果使用普通超凈工作臺(tái),不能打開風(fēng)機(jī)。

    4)如果加入Puromycin后觀察到細(xì)胞死亡較多,務(wù)必及時(shí)更換培養(yǎng)基,以防止死細(xì)胞釋放的有害物質(zhì)影響到具有抗性的細(xì)胞的生長。

    5)需注意病毒液的儲(chǔ)存方式:若在短時(shí)間內(nèi)(3天內(nèi))需要使用,可將病毒液存放于4攝氏度的冰箱中。然而,若無法在短期內(nèi)全部使用,建議將慢病毒液分裝后置于-80攝氏度的冰箱中保存。在分裝時(shí)應(yīng)根據(jù)每次使用的量進(jìn)行,將準(zhǔn)確的病毒液分裝至凍存管中,并做好日期和儲(chǔ)存量的標(biāo)記,封口膜密封以確保密封性。病毒液在-80攝氏度的冰箱中可保存約6個(gè)月。

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